发布时间:2026-01-23
蛋白在转膜途中“神秘失踪”,答案就在这里!
第一现场勘查:蛋白到底去哪儿了?
蛋白有三个可能去向:
还留在凝胶里(根本没转出来
卡在转移途中(凝胶到膜的半路上)
穿透膜跑了(特别是小分子蛋白)
关键线索:转膜后的标准操作
可能性一:蛋白根本没离开凝胶
症状:凝胶染色后蛋白条带明显,膜上却几乎空白。
原因分析
这是最常见的“凶手”!
甲醇浓度不当:
PVDF膜:需要10-20%甲醇
浓度太低(<10%):蛋白与膜结合不牢
浓度太高(>20%):凝胶收缩,大分子蛋白被卡住
忘记加甲醇:直接把膜放Tris-甘氨酸里了
缓冲液重复使用:离子强度改变,pH漂移
解决方案:
✅ 严格按照配方配制新鲜转膜缓冲液
✅ 每次使用新鲜缓冲液,别省这点钱
✅ 大分子蛋白(>100kDa)可尝试降低甲醇至10%,加0.1% SDS帮助转移
时间太短:蛋白还没跑出来
电流/电压太小:动力不足
温度过高:缓冲液过热,蛋白变性聚集
解决方案:
✅ 标准湿转:200-250mA恒流,60-90分钟(根据蛋白大小调整)
✅ 大蛋白需要更长时间
✅ 一定在冰浴或冷室中转膜,避免过热
这个错误很低级,但太常见!
极性接反:蛋白往回跑
膜放错面:该结合蛋白的面没对着凝胶
气泡没赶干净:气泡处蛋白无法转移
解决方案:
✅ 记住口诀:“黑对黑”(负极对负极,通常黑色夹板对凝胶面)
✅ 膜的正面对凝胶(通常是标记面或稍粗糙面)
✅ 用玻璃棒仔细赶走每一层气泡
可能性二:蛋白成功转移但结合不牢
症状:转膜后立即染色有条带,但后续洗涤后信号减弱。
原因分析
没活化或活化不足:PVDF膜是疏水的,必须用甲醇活化才能结合蛋白
活化后放置过久:甲醇挥发,膜又变疏水了
解决方案:
✅ PVDF膜必须用100%甲醇浸泡15-30秒,至半透明
✅ 活化后立即转入转膜缓冲液
✅ 不要提前太久活化
小蛋白用了大孔径膜:<20kDa蛋白用0.45μm孔径,可能穿透或结合不牢
NC膜和PVDF膜用错场景
可能性三:蛋白穿透膜跑了(小蛋白专属)
症状:小分子量蛋白条带特别弱或消失。
原因分析
转膜时间过长:小蛋白被“推”过膜了
电流太大:转移动力过强
膜孔径太大:0.45μm对10kDa蛋白来说就像渔网
解决方案:
✅ 小蛋白用半干转,或缩短湿转时间至30-45分钟
✅ 使用0.2μm孔径膜
✅ 可在转膜缓冲液中加0.1% SDS,帮助转移但防止穿透
系统性排查清单:下次遇到问题这样做
特别情况处理指南
从成功转膜到完美检测
✔ 高特异性------条带清晰锐利,背景干净通透,无论您选择哪种膜,都能获得漂亮的检测结果
✔ 高稳定性------4℃保存时间长,回收使用后信号衰减缓慢,确保实验结果的重复性和可靠性
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